Anestesia para el perro con dirofilariasis: una breve y práctica revisión

Blog

HogarHogar / Blog / Anestesia para el perro con dirofilariasis: una breve y práctica revisión

Jun 07, 2023

Anestesia para el perro con dirofilariasis: una breve y práctica revisión

Parasites & Vectors volumen 16, Número de artículo: 151 (2023) Citar este artículo 1625 Accesos 1 Altmetric Detalles de métricas Los perros con dirofilariosis pueden presentarse para procedimientos que requieren anestesia.

Parásitos y vectores volumen 16, número de artículo: 151 (2023) Citar este artículo

1625 Accesos

1 altmétrica

Detalles de métricas

Los perros con dirofilariasis pueden presentarse para procedimientos que requieren anestesia. Este artículo es una breve y práctica revisión de las técnicas anestésicas para perros con dirofilariosis. Los perros con dirofilariasis, como los que se encuentran en un refugio que se someten a procedimientos de esterilización y castración, pueden ser anestesiados de forma segura antes del tratamiento contra la dirofilariasis. El perro que presenta síndrome de cava puede requerir anestesia de emergencia para la extracción de los gusanos del corazón; Se discuten los fármacos anestésicos y los posibles efectos adversos. Se comentan los agentes anestésicos que se han utilizado.

Los perros que han dado positivo en la prueba del gusano del corazón pueden presentarse para procedimientos que requieren anestesia. Previo a la anestesia se recomienda un examen físico, análisis de sangre básicos y si es posible radiografías de tórax y ecocardiografía. La preocupación es si estos perros pueden ser anestesiados de forma segura. La gravedad de la enfermedad y la necesidad de anestesia ayudarán a determinar los riesgos potenciales. Un perro con síntomas mínimos o leves puede recibir anestesia de forma segura. Se desconoce el comportamiento de los gusanos del corazón adultos durante un evento anestésico. El objetivo de este artículo es revisar las técnicas anestésicas para perros con dirofilariasis.

Los perros pueden presentar signos clínicos que incluyen tos, disnea, síncope, pérdida de peso y letargo. La auscultación puede revelar ruidos pulmonares ásperos y un soplo sistólico apical derecho sobre la válvula tricúspide debido a la regurgitación tricúspide, un ritmo de galope y la división del segundo ruido cardíaco debido a la hipertensión pulmonar [1,2,3,4].

Los hallazgos de las radiografías torácicas y la ecocardiografía pueden incluir agrandamiento del lado derecho con enfermedad avanzada, agrandamiento, truncamiento y tortuosidad de las arterias lobulares caudales, agrandamiento del segmento de la arteria pulmonar e infiltrados o granulomas de la arteria pulmonar [3, 5].

Los análisis de sangre recomendados incluyen un hemograma completo, química sanguínea, análisis de orina y perfil de coagulación sanguínea. Las anomalías que se observan comúnmente son eosinofilia, basofilia, enzimas hepáticas elevadas, azotemia y trombocitopenia con coagulación intravascular diseminada (CID) subclínica. Estos análisis de sangre ayudarán a comprender el alcance de la afectación del sistema de órganos [3, 4].

Un artículo reciente analizó la anestesia en perros con dirofilaria positiva sometidos a procedimientos de esterilización o castración en un refugio [2]. Todos los perros tenían un estatus I o II de la Sociedad Estadounidense de Anestesiólogos (ASA); I se define como pacientes sanos normales y II son pacientes con enfermedad sistémica leve [6]. Los perros dieron positivo en dirofilariosis (HW) y se les realizó una estadificación adicional con radiografías torácicas. Los perros fueron definidos por la American Heartworm Society hasta la etapa 2, enfermedad leve. El protocolo fue respetuoso con el sistema cardiovascular para reducir la cantidad de agentes anestésicos con efectos depresores cardiovasculares conocidos y seleccionar agentes para mantener el gasto cardíaco y reducir el dolor. El protocolo fue acepromacina 0,01 a 0,05 mg/kg SC, administrada 1 a 2 h antes de la cirugía, y butorfanol 0,1 mg/kg IM y meloxicam 0,2 mg/kg IM o carprofeno 2 mg/kg SC, administrados como analgesia. La inducción se realizó con telazol 3 a 6 mg/kg o ketamina/diazepam 3 a 6 mg/kg/0,25 a 5 mg/kg IV con mantenimiento con isoflurano o sevoflurano. Se realizó un bloqueo testicular con lidocaína en perros machos. Todos los perros recibieron 10 ml/kg/h de solución de Ringer lactato (LRS) IV. Todos los perros se recuperaron de la anestesia sin incidentes (Tabla 1).

La presencia de gusanos del corazón adultos conduce a daño patológico por lesión endotelial pulmonar directa, proliferación de la mioíntima, endarteritis obliterativa, aumento de mediadores vasoconstrictores, trombosis y tromboembolismo que conducen a hipertensión pulmonar [3]. Esta hipertensión pulmonar ejerce una carga de presión sobre el corazón derecho y puede provocar disfunción del ventrículo derecho, arritmias e insuficiencia cardíaca del lado derecho. La muerte del gusano del corazón y la liberación de antígenos pueden dañar el parénquima pulmonar, lo que se manifiesta como neumonitis y el desarrollo de neumonitis alérgica. El signo más común de neumonitis es la tos y el aumento de los ruidos pulmonares. Los crepitantes se deben a inflamación eosinofílica y/o fibrosis. En las radiografías se puede observar un infiltrado intersticial [3]. El gusano del corazón causa inflamación dentro de las arterias y el intersticio pulmonar y alteración endotelial con adhesión de plaquetas y leucocitos. Éste es el fundamento del uso de glucocorticoides antiinflamatorios. El daño endotelial, la muerte de los gusanos y la fragmentación aumentan el riesgo de trombosis y tromboembolismo pulmonar (TEP) [3]. Los signos de PTE por dirofilariosis incluyen intolerancia al ejercicio, tos, cianosis, hemoptisis, disnea, colapso y ascitis [3]. Esto da como resultado una sobrecarga de volumen y presión del ventrículo derecho, agrava los cambios hemodinámicos debido a la insuficiencia tricuspídea y puede provocar congestión sistémica. La precarga reducida en el ventrículo izquierdo provoca una reducción del gasto cardíaco con deterioro del flujo sanguíneo tisular y del suministro de oxígeno. Se pueden observar arritmias supraventriculares y ventriculares [3].

La descarga del corazón derecho se realiza con el inodilatador, pimobendán y vasodilatación pulmonar con sildenafil. Se administra pimobendan 0,25 mg/kg cada 12 h VO y sildenafilo 1 mg/kg cada 8 h VO para reducir la poscarga del ventrículo derecho con aumento de la inotropía y, por lo tanto, mejorar el retorno venoso pulmonar y el gasto cardíaco. La distensión yugular es indicativa de aumento de la presión auricular derecha [3]. Estos perros también se beneficiarán de la oxigenoterapia, especialmente si tienen dificultad respiratoria grave.

Los gusanos del corazón aumentan la poscarga y esto conduce a una disminución del volumen sistólico. Los gusanos del corazón que se encuentran en las arterias pulmonares provocan oclusión vascular, lo que disminuye el área transversal total de los vasos pulmonares y es una causa importante de aumento de la resistencia vascular pulmonar [7]. Hay una obstrucción significativa del flujo sanguíneo, especialmente con gusanos muertos que producen émbolos.

La hipertensión pulmonar también puede facilitar la reubicación de gusanos desde las arterias pulmonares distales hacia las arterias pulmonares más proximales y el corazón, produciendo el síndrome de la cava multisistémico.

El síndrome de Caval es una manifestación potencialmente mortal de la dirofilariasis que conduce a insuficiencia cardíaca hacia adelante y hacia atrás. Los signos clínicos son tiempo de llenado capilar (TRC) prolongado, taquicardia, mala calidad del pulso, shock cardiogénico, mala perfusión, hemólisis intravascular, palidez y pigmentación con ictericia, hemoglobinuria y mucosas pálidas. El síndrome de Caval se caracteriza por hipertensión pulmonar grave, disminución del gasto cardíaco, desplazamiento y migración retrógrada de gusanos del corazón adultos hacia las arterias pulmonares principales, la aurícula derecha, el ventrículo derecho y la vena cava [1, 7, 8]. Los gusanos se reubican en el orificio de la válvula tricúspide, lo que produce un flujo regurgitante de gran volumen y obstrucción del flujo de entrada del ventrículo derecho junto con hipertensión pulmonar [3, 7]. El desplazamiento retrógrado de los gusanos del corazón desde las arterias pulmonares hacia el corazón derecho puede alterar mecánicamente la válvula tricúspide al enredarse en el aparato valvular y obstruir potencialmente el flujo sanguíneo hacia la aurícula y el ventrículo derechos. La disminución del gasto cardíaco y la embolia arterial pulmonar de gusanos muertos pueden desempeñar un papel en la migración retrógrada de los gusanos del corazón desde la arteria pulmonar a la vena cava caudal [5, 9]. Los signos clínicos adicionales son ascitis, distensión yugular, soplo cardíaco, pulsos femorales débiles y debilidad profunda. Una gran cantidad de gusanos en el corazón derecho se entrelazan y pasan a través del aparato de la válvula tricúspide. Insuficiencia tricuspídea grave potencialmente mortal con gasto cardíaco deficiente, resultado de lisis intravascular de glóbulos rojos que conduce a hemoglobinemia y hemoglobinuria. Hay una disminución del volumen del ventrículo izquierdo y una disminución del flujo hacia adelante del ventrículo izquierdo. La cantidad de gusanos necesarios para causar el síndrome de cava depende del tamaño del paciente, y una gran carga de gusanos puede poner en peligro la vida. El pronóstico es malo sin una extracción inmediata del gusano del corazón y debe realizarse lo antes posible [8]. Estos perros están en shock y requieren estabilización antes de eliminar las lombrices. Coloque un catéter intravenoso para administrar un líquido intravenoso con electrolitos equilibrados, como LRS a razón de 2 a 5 ml/kg/h. Los líquidos intravenosos son necesarios para tratar el déficit de carga de volumen en el corazón derecho [8]. Los productos sanguíneos pueden incluir plasma fresco congelado (PFC) para el tratamiento de la CID, concentrados de glóbulos rojos (pRBC) para el tratamiento de la anemia o sangre entera para proporcionar plasma y glóbulos rojos a dosis de 2 a 5 mg/kg/h IV [1 ]. Al administrar hemoderivados, reduzca la tasa de terapia con líquidos cristaloides para evitar la sobrecarga de volumen. Los vasopresores pueden incluir dopamina en dosis de 2 a 5 µg/kg/min o norepinefrina en dosis de 0,1 a 0,5 µg/kg/min IV. Una vez que se han extraído los gusanos y se mejora la función cardíaca, se puede aumentar la tasa de líquido de manera segura [3]. La preoxigenación es beneficiosa para ayudar a corregir la hipoxia [8].

Los medicamentos preoperatorios dependen del médico y comúnmente incluyen difenhidramina, prednisona, pimobendan y sildenafil. Sildenafil es un inhibidor selectivo de las enzimas fosfodiesterasa tipo 5 específicas de cGMP para tratar la hipertensión pulmonar. El pimobendán es un sensibilizador del calcio que aumenta la función sistólica del ventrículo derecho y también es un inhibidor de la enzima fosfodiesterasa-3, que afecta la vasculatura pulmonar [9] (Tabla 2).

El tratamiento de elección para la extracción es mediante una venotomía yugular derecha [1, 3]. Se realiza un bloqueo local con 1 a 2 mg/kg de lidocaína sobre la vena yugular derecha, que puede ligarse permanentemente o ocluirse temporalmente con cinta umbilical sobre el sitio de la venotomía. Se realiza la venotomía y el dispositivo de recuperación se pasa por la vena yugular hasta la vena cava y la aurícula derecha. La guía durante el procedimiento de extracción se puede realizar con ecocardiografía, transtorácica o transesofágica para identificar gusanos en las cavidades cardíacas derechas y/o en la arteria pulmonar, y fluoroscopia [3]. La ecocardiografía revela muchas líneas hiperecoicas paralelas cortas que imitan "signos iguales" que se mueven hacia adelante y hacia atrás con cada latido del corazón como un gran haz entre la aurícula derecha y la entrada del ventrículo derecho [5, 9]. La ecocardiografía transesofágica (ETE) se ha utilizado para la visualización durante la extracción de lombrices. El ETE permitió una visualización clara de los gusanos del corazón en la cavidad cardíaca derecha y en la arteria pulmonar, así como de la punta de las pinzas al abrir y cerrar las mandíbulas [5]. La fluoroscopia es esencial para garantizar que los fórceps estén en una posición adecuada y segura, ya que la ETE no permite la visualización de los fórceps en sitios distales. La ETE ofrece la ventaja de permitir información directa relacionada con la ubicación y la cantidad de gusanos, facilitar el despliegue de las pinzas y confirmar que los gusanos se han eliminado de los vasos y del corazón derecho. ETE proporciona información funcional intraoperatoria en tiempo real [5]. Una vez que el dispositivo de recuperación está colocado correctamente, los gusanos se agarran y se retiran tirando con cuidado, ya que los gusanos pueden enrollarse alrededor de las cuerdas tendinosas. No utilice fuerza excesiva ni tire demasiado fuerte, ya que esto puede provocar la laceración del gusano, la liberación de antígeno y la posterior anafilaxia. La maceración de gusanos produce una liberación masiva de antígenos, vasoconstricción pulmonar y CID [3]. Los resultados exitosos están entre el 50 y el 67% [9]. Los posibles efectos adversos durante la extracción del gusano del corazón incluyen paro cardíaco, hipotensión, CID e incapacidad para eliminar todos los gusanos [1]. Una vez que se eliminan los gusanos, la insuficiencia cardíaca derecha disminuye rápidamente. Cuando se eliminan los gusanos, la insuficiencia tricuspídea desaparece, el gasto cardíaco aumenta y la presión auricular derecha disminuye.

La extracción se realiza bajo anestesia general o sedación profunda. Un estudio utilizó midazolam, diazepam, fentanilo, etomidato y lidocaína intravenosa con mantenimiento con sevoflurano. En este estudio retrospectivo de 2010, murieron 6 de 21 perros. Dos perros murieron durante el procedimiento de paro cardíaco secundario a bradicardia que no respondía; Se restableció el ritmo sinusal normal, pero los perros no recuperaron el conocimiento y posteriormente fueron sacrificados. Tres perros murieron 24 h después de la cirugía y un perro murió 72 h después. Dos de estos perros tenían CID antes de la cirugía y los cuatro estaban hipotensos durante la cirugía. Un perro desarrolló un paro cardíaco que requirió reanimación durante la cirugía y luego fue sacrificado, otro desarrolló convulsiones después de la cirugía y fue sacrificado, uno murió de neumonía por aspiración y un perro desarrolló CID progresiva. Catorce de 21 perros sobrevivieron hasta el alta; tuvieron anestesia y recuperación sin incidentes. Los perros con ALT sérica alta tuvieron una tasa de supervivencia más baja. Según el modelo, la ALT alta y los gusanos del corazón en la arteria pulmonar predijeron una tasa de supervivencia del 0% en esta pequeña muestra de 18 perros. Incluso con la extracción se encuentran tasas de mortalidad del 30 al 40% con un pronóstico desfavorable a reservado [1] (Tabla 3).

Los agentes anestésicos que se han utilizado incluyen midazolam, diazepam, fentanilo, etomidato, midazolam y fentanilo CRI y sevoflurano [1]. Otros anestésicos incluyen atropina, benzodiazepinas, fentanilo, lidocaína, propofol e inhalantes. El uso de agonistas alfa dos es controvertido. Las ventajas potenciales de la dexmedetomidina son la prevención de las arritmias inducidas por catecolaminas y el efecto ahorrador de anestésicos inhalados. El uso es controvertido en pacientes con compromiso cardíaco ya que los agonistas alfa dos causan vasoconstricción del músculo liso vascular; esto aumenta la presión sistémica y pulmonar y provoca una bradicardia refleja. Hay un aumento de la poscarga del ventrículo izquierdo, un aumento del trabajo cardíaco y una reducción del gasto cardíaco y del suministro de oxígeno.

Se prefiere el uso de opioides y benzodiacepinas ya que tienen efectos cardiovasculares mínimos y la bradicardia mediada por opioides puede tratarse con anticolinérgicos si es necesario. Los agonistas alfa dos pueden provocar una reducción grave del gasto cardíaco en dosis ≥ 5 µg/kg. La acepromacina es controvertida ya que la disminución de la resistencia vascular sistémica mediada por el antagonista de los receptores adrenérgicos alfa-1 puede provocar disminuciones de la presión arterial que son duraderas e irreversibles. El etomidato y el fentanilo, combinados con una benzodiazepina, tienen efectos mínimos sobre la contractilidad cardíaca y la resistencia vascular sistémica y son útiles para la inducción para mantener el gasto cardíaco. Se recomienda la monitorización invasiva de la presión arterial [4].

Un informe de caso analizó la extracción quirúrgica mínimamente invasiva realizada con éxito en dos perros [10]. La extracción se realizó bajo sedación profunda con dexmedetomidina 5 µg/kg, butorfanol 0,4 mg/kg y lidocaína 2 mg/kg IV y lidocaína CRI 0,04 mg/kg/min IV. Se administró etomidato 0,1 mg/kg IV seguido de intubación. La anestesia se mantuvo con sevoflurano con un vaporizador configurado al 0,5%. Se realizó un bloqueo local de lidocaína/bupivacaína sobre el sitio quirúrgico. Si había algún movimiento se administró dexmedetomidina a 1 µg/kg IV. Ocasionalmente se observaron CVP multifocales durante la recuperación del gusano del corazón. Al final del procedimiento, la dexmedetomidina se revirtió con 0,05 mg/kg IM de atipamezol. La analgesia se proporcionó con buprenorfina a 0,01 mg/kg IV. Esta técnica de sedación proporcionó un resultado satisfactorio en estos dos perros [10].

En algunos casos, después de la anestesia general, los gusanos del corazón pueden migrar a las arterias pulmonares, haciendo imposible la extracción [1]. Estos casos luego se tratan con adulticidio. Un artículo reciente analizó la resolución del síndrome de cava que se produjo durante la estabilización hemodinámica inicial de los perros [9]. Este artículo analizó cinco perros que se sometieron a estabilización para mejorar su hemodinámica antes de la extracción del gusano del corazón. Durante el tratamiento de estabilización, estos perros tuvieron una resolución espontánea rara e imprevista de su síndrome de cava. Todos los perros tenían un soplo sistólico apical derecho auscultado de 3 a 5/6. Los perros recibieron terapia con líquidos cristaloides intravenosos, 60 a 100 ml/kg/día, o bolos de 10 ml/kg para tratar la hipotensión, pimobendan 0,25 a 0,3 mg/kg VO cada 12 h, sildenafilo 1,1 a 2,8 mg/kg VO cada 8 h, prednisona 0,5 a 0,7 mg/kg VO cada 12 a 24 h o dexametasona-SP 0,15 mg/kg IV cada 24 h, clopidogrel 2,9 mg/kg VO cada 24 h en un perro y oxigenoterapia. A la mañana siguiente, la ecocardiografía no mostró signos de dirofilariosis, lo que indicaba que el flujo sanguíneo había devuelto los dirofilariosis a la circulación pulmonar. El procedimiento de extracción se canceló y los perros fueron tratados con adulticida según las pautas de la American Heartworm Society y continuaron con pimobendan y sildenafil [9]. Se debe evitar la terapia excesiva con líquidos, ya que puede afectar el gasto cardíaco al empeorar la regurgitación tricuspídea. La extracción del gusano del corazón es necesaria para la mayoría de los perros con síndrome de cava, pero la estabilización médica puede resultar en la resolución espontánea del síndrome de cava.

Después de la extracción del gusano del corazón, el tratamiento médico debe incluir un adulticida con seguimiento, ya que la extracción no puede llegar a las arterias pulmonares para recuperar los gusanos ubicados allí [8]. La American Heartworm Society recomienda un tratamiento de cuatro semanas con doxiciclina seguido de un mes de descanso y luego la administración del tratamiento adulticida de tres inyecciones [11]. Estos perros pueden tener un buen pronóstico a largo plazo [1, 3]. La mortalidad posoperatoria sigue siendo posible tras la extracción exitosa del gusano y la recuperación de la anestesia debido a una embolia pulmonar [5]. Para reducir el riesgo de eventos embólicos, considere la restricción del ejercicio y la administración de glucocorticoides, anticoagulantes y vasodilatadores [5].

Cuatro perros que presentaban síndrome de cava fueron sometidos a anestesia para la extracción de lombrices. Todos los perros fueron clasificados como estatus ASA IV E, que son pacientes con enfermedad sistémica grave que es una amenaza constante para la vida y E constituye una emergencia [6]. Los cuatro perros lograron recuperar las lombrices con éxito y sobrevivieron.

Un bulldog que pesaba 23,8 kg con un PCV del 35 % y TS de 6,0 g/dl se sometió a una extracción de urgencia del gusano del corazón. La medicación preoperatoria incluyó maripitant 1 mg/kg y dexametasona SP 0,15 mg/kg, ambos administrados por vía intravenosa. La premedicación consistió en fentanilo 3 µg/kg IV, midazolam 0,2 mg/kg IV y lidocaína 2 mg/kg IV. Se administró propofol 0,8 mg/kg por vía intravenosa para permitir la intubación. Se mantuvieron una infusión de velocidad constante (CRI) de fentanilo de 5 µg/kg/h IV y de lidocaína de 3 mg/kg/h IV durante la extracción de lombrices; la anestesia adicional fue proporcionada por isoflurano. La fluidoterapia fue LRS a 3 ml/kg/h IV. La recuperación transcurrió sin incidentes.

A un perro mestizo maltés de 8 años de edad, con un peso de 4 kg, un PCV de 32 % y TS de 5,4 g/dl, se le extrajo dirofilariasis. Se administró difenhidramina 2 mg/kg IM antes de la anestesia. La anestesia consistió en butorfanol 0,2 mg/kg IV, midazolam 0,2 mg/kg IV y etomidato 1 mg/kg IV para permitir la intubación con mantenimiento de sevoflurano. La fluidoterapia fue LRS 2 ml/kg/h IV y, debido a la anemia, se administraron 45 ml de glóbulos rojos por vía IV. Se añadió lidocaína a una dosis de carga de 2 mg/kg y luego 3 mg/kg/h IV CRI. El perro tenía una hipotensión grave; Se administró un bolo de líquido de 10 ml/kg IV seguido de un segundo bolo de 5 ml/kg IV. Se administró dobutamina de 5 µg/kg/min a 10 µg/kg/min por vía intravenosa para intentar mejorar la presión arterial. En un momento durante el procedimiento no se palparon pulsos periféricos ni se obtuvieron lecturas de presión arterial. Las lecturas de la presión arterial regresaron una vez que se retiraron los gusanos y se administró el segundo bolo de líquido. En recuperación, se administraron flumazenil 0,1 mg IV, naloxona 0,12 mg IV, una segunda dosis de flumazenil IV y una segunda dosis de 0,08 mg de naloxona IV para revertir la anestesia y permitir la extubación.

A un chihuahua de 6 años de edad, peso 3.5 kg con PCV 21% y TS 5.2 g/dl se le realizó extracción de dirofilariasis. La anestesia consistió en hidromorfona 0,1 mg/kg IV, midazolam 0,25 mg/kg IV, maripotant 1 mg/kg IV, propofol 2 mg/kg IV e isoflurano. LRS se administró en bolo de 15 ml antes de la inducción y luego 5 mg/kg/h IV durante el procedimiento. El evento anestésico y la recuperación fueron suaves. Se extrajeron un total de 13 gusanos.

Bruce era un MI de 7 años, un perro de 6,8 kg, no vacunado, sin HW preventivo, lleno de pulgas con un PCV del 21%. Presentó con insuficiencia cardiaca derecha por síndrome de cava. Al perro se le habían administrado esteroides, difenhidramina, cerenia, sildenafil, pimobendan y una transfusión de pRBC ya que el PCV inicial era del 15 %. También le administraron Capstar™ (nitenpiram) por vía rectal para tratar la infestación de pulgas. El perro fue inducido en la sala de radiología intervencionista. Los fármacos anestésicos se administraron por vía intravenosa e incluyeron fentanilo, midazolam, lidocaína, etomidato y mantenimiento con sevoflurano. La fluidoterapia fue LRS a 2 ml/kg/h IV junto con una dosis de carga de lidocaína CRI de 2 mg/kg y 3 mg/kg/h IV. Se extrajeron veintitrés gusanos y al perro le fue bien.

Se recomienda realizar un hemograma completo preanestésico, una química, una UA y potencialmente un panel de coagulación en perros con dirofilaria positiva antes de la anestesia para evaluar el grado de afectación del órgano. Las radiografías torácicas y el examen ecocardiográfico proporcionarán información sobre el grado de compromiso cardíaco. La anestesia debe realizarse con un protocolo que preserve el sistema cardiovascular. El síndrome de Caval es una afección potencialmente mortal y requiere la extracción del gusano del corazón. Puede ser necesaria la administración de hemoderivados y vasopresores en el síndrome de cava. Considere administrar difenhidramina y dexametasona antes de la extracción del gusano del corazón para ayudar a prevenir una respuesta anafiláctica a los gusanos macerados o desgarrados. Pimobendan y sildenifil se administran para mejorar la función ventricular derecha y tratar la hipertensión pulmonar. Los perros con dirofilariasis pueden ser anestesiados de forma segura, pero requieren un seguimiento diligente durante y después del episodio anestésico.

No aplica.

Coagulación intravascular diseminada

Intravenoso

intramuscular

Sociedad Americana de Anestesiólogos

Subcutáneo

gusano del corazón

Solución de Ringer lactato

Plasma fresco congelado

Glóbulos rojos concentrados

Fármacos anti-inflamatorios no esteroideos

Ecocardiografía transesofágica

Infusión a velocidad constante

Contracción ventricular prematura

por nosotros

El volumen del celular esta alto

Solidos totales

Tromboembolismo pulmonar

Tiempo de llenado capilar

Bove CM, Gordon SG, Saunders AB, Miller MW, Roland RM, Achen SE, et al. Resultado del tratamiento quirúrgico mínimamente invasivo del síndrome de la cava del gusano del corazón en perros: 42 casos (1999-2007). J Am Vet Med Assoc. 2010;236:187–92.

Artículo PubMed Google Scholar

Peterson KM, Chappell DE, Lewis B, et al. Los perros positivos al gusano del corazón se recuperan sin complicaciones de la esterilización quirúrgica utilizando un protocolo de anestesia conservadora cardiovascular. Parasitol veterinario. 2014;206:83–5.

Artículo CAS PubMed Google Scholar

Ames MK, Atkins CE. Tratamiento de perros con dirofilariosis grave. Parasitol veterinario. 2020;283:1–6.

Artículo de Google Scholar

Congdon JM. Enfermedad cardiovascular. En: Johnson RA, Snyder LBC, Schroeder CA, editores. Anestesia canina y felina y enfermedad coexistente. 2da ed. wiley; 2022. pág. 1–85.

Google Académico

Cavaliere L, Romito G, Domenech O, et al. Eliminación del gusano del corazón guiada por ecocardiografía transesofágica en un perro con síndrome de cava adquirido naturalmente. Asociación J Am Anim Hosp. 2017;53:96–100.

Artículo PubMed Google Scholar

Brodbelt DC, Flaherty D, Pettifer GR. Riesgo de anestesia y consentimiento informado. En: Grimm KA, Lamont LA, Tranquilli WJ, Greene SA, Robertson SA, editores. Anestesia y analgesia veterinaria. 5ª edición. wiley; 2015. pág. 11–22.

Google Académico

Jones SL. Parte 1: comprender el desarrollo del síndrome de cava. La práctica veterinaria de hoy 2015: 63–67.

Jones SL. Parte 3: manejo del síndrome de cava. La práctica veterinaria de hoy 2016: 55–61.

Pariaut R, Woo Jung S, Vila J, et al. Resolución del síndrome de cava durante la estabilización hemodinámica inicial en perros con dirofilariosis. J Vet Emerg Crit Care. 2020;30:295–301.

Artículo de Google Scholar

Chiavaccini L, Claude AK, Meyer RE. Un protocolo anestésico para la eliminación del gusano del corazón en adultos en dos casos de síndrome de cava canino. Veterinario Anaesth Analg. 2014;41:105–8.

Artículo PubMed Google Scholar

Directrices caninas actuales para la prevención, el diagnóstico y el tratamiento de la infección por dirofilaria (Dirofilaria immitis) en perros American Heartworm Society 2020

Descargar referencias

Ninguno.

Facultad de Medicina Veterinaria, Universidad de Georgia, Atenas, GA, 30606, EE. UU.

Jane Quandt

También puedes buscar este autor en PubMed Google Scholar.

JQ realizó la revisión de la literatura, concibió y diseñó la estructura del artículo.

Correspondencia a Jane Quandt.

No aplica.

No aplica.

El autor no declara intereses en competencia.

Springer Nature se mantiene neutral con respecto a reclamos jurisdiccionales en mapas publicados y afiliaciones institucionales.

Acceso Abierto Este artículo está bajo una Licencia Internacional Creative Commons Attribution 4.0, que permite el uso, compartir, adaptación, distribución y reproducción en cualquier medio o formato, siempre y cuando se dé el crédito apropiado al autor(es) original(es) y a la fuente. proporcione un enlace a la licencia Creative Commons e indique si se realizaron cambios. Las imágenes u otro material de terceros en este artículo están incluidos en la licencia Creative Commons del artículo, a menos que se indique lo contrario en una línea de crédito al material. Si el material no está incluido en la licencia Creative Commons del artículo y su uso previsto no está permitido por la normativa legal o excede el uso permitido, deberá obtener permiso directamente del titular de los derechos de autor. Para ver una copia de esta licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/. La exención de dedicación de dominio público de Creative Commons (http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0/) se aplica a los datos disponibles en este artículo, a menos que se indique lo contrario en una línea de crédito a los datos.

Reimpresiones y permisos

Quandt, J. Anestesia para perros con dirofilariasis: una breve revisión práctica. Vectores de parásitos 16, 151 (2023). https://doi.org/10.1186/s13071-023-05722-3

Descargar cita

Recibido: 27 de enero de 2023

Aceptado: 01 de marzo de 2023

Publicado: 28 de abril de 2023

DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-023-05722-3

Cualquier persona con la que compartas el siguiente enlace podrá leer este contenido:

Lo sentimos, actualmente no hay un enlace para compartir disponible para este artículo.

Proporcionado por la iniciativa de intercambio de contenidos Springer Nature SharedIt